Preview

Травматология и ортопедия России

Расширенный поиск

Костные ксеноматериалы в травматологии и ортопедии (аналитический обзор литературы)

Полный текст:

Аннотация

Цель аналитического обзора — оценить опыт применения костных ксеноматериалов в травматологии и ортопедии. Методы. Поиск литературных источников проводился в открытых электронных базах данных научной литературы PubMed и eLIBRARY. Глубина поиска — 20 лет. Результаты. Обнаружено 13 источников, в которых описан опыт клинического применения костнопластических материалов костного ксеногенного происхождения в травматологии и ортопедии. Отмечено, что наибольшая эффективность (от 92 до 100%) обнаруживается в случаях применения ксеноматериала для замещения дефектов при внутрисуставных переломах и ревизионном эндопротезировании. Случаи неудовлетворительных исходов связаны с отсутствием интеграции материала и его отторжением. Наименьшая эффективность (от 41,9 до 46,1%) отмечена при реконструктивных операциях на стопе. Отмечено отсутствие эффекта после применения ксеногенных костных материалов для замещения дефектов при псевдоартрозе. Основное встречаемое осложнение — инфицирование материала. Расчетный процент осложнений при применении ксеноматериалов после суммирования данных литературы составил 7,53% (18 случаев из 239, ДИ 5–95%: 4,53–11,21). Выделено два направления улучшения технических и биологических характеристик костных ксеноматериалов: 1. Модификация исходного ксеноматрикса (развитие технологии очистки, изменение структуры и химического состава матрикса кости); 2. Введение в объем матрикса дополнительных элементов (биологически активные вещества, стволовые клетки). Отмечено, что ксеноматериалы в травматологии и ортопедии могут быть более востребованными за счет уточнения и расширения показаний к их применению. Заключение. Ксеногенный костный материал в современной практике травматологии и ортопедии нашел свое применение для восполнения недостатка костной ткани при ревизионных операциях по эндопротезированию, а также для замещения дефектов кости при некоторых видах переломов. Этот материал относительно безопасен, а возможность его модифицирования позволяет улучшать его биологические характеристики.

Об авторах

М. В. Стогов
ФГБУ «Российский научный центр „Восстановительная травматология и ортопедия“ им. академика Г.А. Илизарова» Минздрава России
Россия
Стогов Максим Валерьевич — д-р биол. наук, доцент, ведущий научный сотрудник


Д. В. Смоленцев
ООО «Мед-Инж-Био»
Россия
Смоленцев Дмитрий Владимирович — директор


Е. А. Киреева
ФГБУ «Российский научный центр „Восстановительная травматология и ортопедия“ им. академика Г.А. Илизарова» Минздрава России
Россия
Киреева Елена Анатольевна — канд. биол. наук, старший научный сотрудник


Список литературы

1. Li D., Bi L., Meng G.L., Liu M., Jin J., Liu Y. et al. Multi-variety bone bank in China. Cell Tissue Bank. 2010;11(3):233-240. doi: 10.1007/s10561-009-9151-2.

2. Oryan A., Alidadi S., Moshiri A., Maffulli N. Bone regenerative medicine: classic options, novel strategies, and future directions. J Orthop Surg Res. 2014;9(1):18. doi: 10.1186/1749-799X-9-18.

3. Dimitriou R., Jones E., McGonagle D., Giannoudis P.V. Bone regeneration: current concepts and future directions. BMC Med. 2011;9:66. doi: 10.1186/1741-7015-9-66.

4. Накоскин А.Н., Силантьева Т.А., Накоскина Н.В., Талашова И.А., Тушина Н.В. Репаративные процессы при алло- и ксеноимплантации внеклеточного матрикса кости. Патологическая физиология и экспериментальная терапия. 2018;62(3):60-66. doi: 10.25557/0031-2991.2018.03.60-66. Nakoskin A.N., Silantjeva T.A., Nakoskina N.V., Talashova I.A., Tushina N.V. [Reparative processes in alloand xenoimplantation of extracellular bone matrix]. Patologicheskaya fiziologiya i eksperimental’naya terapiya [Pathological Physiology and Experimental Therapy]. 2018;62(3):60-66. (In Russian). doi: 10.25557/0031-2991.2018.03.60-66.

5. Athanasiou V.T., Papachristou D.J., Panagopoulos A., Saridis A., Scopa C.D., Megas P. Histological comparison of autograft, allograft-DBM, xenograft, and synthetic grafts in a trabecular bone defect: an experimental study in rabbits. Med Sci Monit. 2010;16(1):BR24-31.

6. Galia C.R., Lourenço A.L., Rosito R., Souza Macedo C.A., Camargo L.M. Physicochemical characterization of lyophilized bovine bone grafts. Rev Bras Ortop. 2015;46(4):444-451. doi: 10.1016/S2255-4971(15)30260-3.

7. Анастасиева Е.А., Садовой М.А., Воропаева А.А., Кирилова И.А. Использование ауто и аллотрансплантатов для замещения костных дефектов при резекциях опухолей костей. Травматология и ортопедия России. 2017;23(3):148-155. doi: 10.21823/2311-2905-2017-23-3-148-155. Anastasieva E.A., Sadovoy M.A., Voropaeva V.V., Kirilova I.A. [Reconstruction of bone defects after tumor resection by autoand allografts (review of literature)]. Travmatologiya i ortopediya Rossii [Traumatology and Orthopedics of Russia]. 2017;23(3):148-155. (In Russian). doi: 10.21823/2311-2905-2017-23-3-148-155.

8. Бовкис Г.Ю., Куляба Т.А., Корнилов Н.Н. Компенсация дефектов метаэпифизов бедренной и большеберцовой костей при ревизионном эндопротезировании коленного сустава — способы и результаты их применения (обзор литературы). Травматология и ортопедия России. 2016;22(2):101-113. doi: 10.21823/2311-2905-2016-0-2-101-113. Bovkis G.Y., Kulyaba T.A., Kornilov N.N. [Management of femur and tibia metaphyseal bone defects during revision total knee arthroplasty — methods and outcomes (review)]. Travmatologiya i ortopediya Rossii [Traumatology and Orthopedics of Russia]. 2016;(2):101-113. (In Russian). doi: 10.21823/2311-2905-2016-0-2-101-113.

9. Ваза А.Ю., Файн А.М., Иванов П.А., Клюквин И.Ю., Сластинин В.В., Боровкова Н.В., Хватов В.Б. Анализ применения различных вариантов костной пластики у пострадавших с внутрисуставными переломами. Трансплантология. 2015;(4):6-12. Vaza A.Y., Fayn A.M., Ivanov P.A., Klyukvin I.Y., Slastinin V.V., Borovkova N.V., Khvatov V.B. [Analysis of the application of different bone grafting procedures in patients with intra-articular fractures]. Transplantologiya [The Russian Journal of Transplantation]. 2015;(4):6-12. (In Russian).

10. Зуев П.А., Павленко Н.Н., Зуев П.П. Поиск оптимального способа операции ревизионного эндопротезирования тазобедренного сустава. Гений ортопедии. 2011;(1):134-139. Zuyev P.A., Pavlenko N.N., Zuyev P.P. [The search of the best way for the hip surgical revision endoprosthetics]. Genij Ortopedii. 2011;(1):134-139. (In Russian).

11. Кирилова И.А., Садовой М.А., Подорожная В.Т. Сравнительная характеристика материалов для костной пластики: состав и свойства. Хирургия позвоночника. 2012;(3):72-83. doi: 10.14531/ss2012.3.72-83. Kirilova I.A., Sadovoy M.A., Podorozhnaya V.T. [Comparative characteristics of materials for bone grafting: composition and properties]. Hirurgia pozvonochnika [Spine Surgery]. 2012;(3):72-83. (In Russian). doi: 10.14531/ss2012.3.72-83.

12. Куляба Т.А., Корнилов Н.Н., Селин А.В., Разоренов В.Л., Кроитору И.И., Петухов А.И. и др. Способы компенсации костных дефектов при ревизионном эндопротезировании коленного сустава. Травматология и ортопедия России. 2011;61(3):5-12. doi: 10.21823/2311-2905-2011-0-3-5-12. Kulyaba T.A., Kornilov N.N., Selin A.V., Razorenov V.I., Kroitoru I.I., Petukhov A.I. et al. [The ways of bone defects compensation in revision knee arthroplasty]. Travmatologiya i ortopediya Rossii [Traumatology and Orthopedics of Russia]. 2011;(3):5-12. (In Russian). doi: 10.21823/2311-2905-2011-0-3-5-12.

13. Слизовский Г.В., Кужеливский И.И. Современное состояние проблемы лечения костной патологии у детей. Бюллетень сибирской медицины. 2012;11(2): 64-76. doi: 10.20538/1682-0363-2012-2-64-76. Slizovsky G.V., Kuzhelivsky I.I. [State of the art of the treatment of bone pathology in children]. Bulleten sibirskoj mediciny [Bulletin of Siberian Medicine]. 2012;11(2):64-76. (In Russian). doi: 10.20538/1682-0363-2012-2-64-76.

14. Ibrahim M.S., Raja S., Haddad F.S. Acetabular impaction bone grafting in total hip replacement. Bone Joint J. 2013;95-B(11 Suppl A):98-102. doi: 10.1302/0301-620X.95B11.32834.

15. Leung H.B., Fok M.W., Chow L.C., Yen C.H. Cost comparison of femoral head banking versus bone substitutes. J Orthop Surg (Hong Kong). 2010;18(1): 50-54. doi: 10.1177/230949901001800111.

16. Shibuya N., Jupiter D.C. Bone graft substitute: allograft and xenograft. Clin Podiatr Med Surg. 2015;32(1):21-34. doi: 10.1016/j.cpm.2014.09.011.

17. Бойко Е.М., Брусницын Д.А., Долгалев А.А., Зеленский В.А. Малоинвазивный метод направленной костной регенерации при атрофии альвеолярного гребня. Медицинский алфавит. 2017;298(1):5-9. Boyko E.M., Brusnitsin D.A., Dolgalev A.A., Zelensky V.A. [Minimally invasive method of guided bone regeneration of alveolar ridge]. Medicinskij alfavit [Medical Alphabet]. 2017;298(1):5-9. (In Russian).

18. Столяров М.В., Смирнова А.В., Киртаева А.В., Кандейкина Н.В. Восстановление костной ткани челюсти с применением остеотропного материала «Остеоматрикс». Acta Medica Eurasica. 2016;(3):39-48. Stolyarov M., Smirnova A., Kirtaeva A., Kandeykina N. [Restoration of jaw bony tissue with the use of boneseeking material «Osteomatrix»]. Acta Medica Eurasica. 2016;(3):39-48. (In Russian).

19. Aghazadeh A., Rutger Persson G., Renvert S. A single-centre randomized controlled clinical trial on the adjunct treatment of intra-bony defects with autogenous bone or a xenograft: results after 12 months. J Clin Periodontol. 2012;39(7):666-673. doi: 10.1111/j.1600-051X.2012.01880.x.

20. Al Qabbani A., Al Kawas S., A Razak N.H., Al Bayatti S.W., Enezei H.H., Samsudin A.R. et al. Threedimensional radiological assessment of alveolar bone volume preservation using bovine bone xenograft. J Craniofac Surg. 2018;29(2):e203-e209. doi: 10.1097/SCS.0000000000004263.

21. Benlidayi M.E., Tatli U., Kurkcu M., Uzel A., Oztunc H. Comparison of bovine-derived hydroxyapatite and autogenous bone for secondary alveolar bone grafting in patients with alveolar clefts. J Oral Maxillofac Surg. 2012;70(1):e95-e102. doi: 10.1016/j.joms.2011.08.041.

22. De Bruyckere T., Eghbali A., Younes F., Cleymaet R., Jacquet W., De Bruyn H., Cosyn J. A 5-year prospective study on regenerative periodontal therapy of infrabony defects using minimally invasive surgery and a collagen-enriched bovine-derived xenograft. Clin Oral Investig. 2018;22(3):1235-1242. doi: 10.1007/s00784-017-2208-x.

23. Jambhekar S., Kernen F., Bidra A.S. Clinical and histologic outcomes of socket grafting after flapless tooth extraction: a systematic review of randomized controlled clinical trials. J Prosthet Dent. 2015;113(5):371-382. doi: 10.1016/j.prosdent.2014.12.009.

24. Lima R.G., Lima T.G., Francischone C.E., Turssi C., Souza Picorelli Assis N.M., Sotto-Maior B.S. Bone Volume dynamics and implant placement torque in horizontal bone defects reconstructed with autologous or xenogeneic block bone: a randomized, controlled, split-mouth, prospective clinical trial. Int J Oral Maxillofac Implants. 2018;33(4):888-894. doi: 10.11607/jomi.6288.

25. Nam J.W., Khureltogtokh S., Choi H.M., Lee A.R., Park Y.B., Kim H.J. Randomised controlled clinical trial of augmentation of the alveolar ridge using recombinant human bone morphogenetic protein 2 with hydroxyapatite and bovine-derived xenografts: comparison of changes in volume. Br J Oral Maxillofac Surg. 2017;55(8):822-829. doi: 10.1016/j.bjoms.2017.07.017.

26. Goff T., Kanakaris N.K., Giannoudis P.V. Use of bone graft substitutes in the management of tibial plateau fractures. Injury. 2013;44 Suppl 1:S86-94. doi: 10.1016/S0020-1383(13)70019-6.

27. Кутепов С.М., Волокитина Е.А., Гилев М.В., Антониади Ю.В., Помогаева Е.В. Аугментация костных дефектов дистального отдела большеберцово кости синтетическим b-трикальций фосфатом и ксенопластическим материалом «Остеоматрикс» при хирургическом лечении внутрисуставных импрессионных переломов. Гений ортопедии. 2016;(3):14-20. doi: 10.18019/1028-4427-2016-3-14-20. Kutepov S.M., Volokitina E.A., Gilev M.V., Antoniadi Iu.V., Pomogaeva E.V. [Augmentation of distal tibial defects with synthetic b-tricalcium phasphate and Osteomatrix xenoplastic material in surgical treatmentof intra-articular impression fractures]. Genij Ortopedii. 2016;(3):14- 20. (In Russian). doi: 10.18019/1028-4427-2016-3-14-20.

28. Rhodes J., Mansour A., Frickman A., Pritchard B., Flynn K., Pan Z. et al. Comparison of allograft and bovine xenograft in calcaneal lengthening osteotomy for flatfoot deformity in cerebral palsy. J Pediatr Orthop. 2017;37(3):e202-e208. doi: 10.1097/BPO.0000000000000822.

29. Kubosch E.J., Bernstein A., Wolf L., Fretwurst T., Nelson K., Schmal H. Clinical trial and in-vitro study comparing the efficacy of treating bony lesions with allografts versus synthetic or highly-processed xenogeneic bone grafts. BMC Musculoskelet Disord. 2016;17:77. doi: 10.1186/s12891-016-0930-1.

30. Makridis K.G., Ahmad M.A., Kanakaris N.K., Fragkakis E.M., Giannoudis P.V. Reconstruction of iliac crest with bovine cancellous allograft after bone graft harvest for symphysis pubis arthrodesis. Int Orthop. 2012;36(8):1701-1707. doi: 10.1007/s00264-012-1572-z.

31. Загородний Н.В., Левин В.В., Канаев А.С., Саващук Д.А., Павлов С.А., Панасюк А.Ф., Абакиров М.Д. Ревизионное эндопротезирование тазобедренного сустава с использованием «Остеоматрикса». Политравма. 2011;(3):48-54. Zagorodniy N.V., Levin V.V., Kanaev A.S., Savashchuk D.A., Pavlov S.A., Panasyuk A.F., Abakirov M.D. [Revision endoprosthetics of hip joint with using of Osteomatrix]. Politravma [Polytrauma]. 2011;(3):48-54. (In Russian).

32. Diesel C.V., Ribeiro T.A., Guimarães M.R., Macedo C.A.S, Galia C.R. Acetabular revision in total hip arthroplasty with tantalum augmentation and lyophilized bovine xenograft. Rev Bras Ortop. 2017;52(Suppl 1):46-51. doi: 10.1016/j.rboe.2017.08.009.

33. Meyer S., Floerkemeier T., Windhagen H. Histological osseointegration of Tutobone: first results in human. Arch Orthop Trauma Surg. 2008;128(6):539-544. doi: 10.1007/s00402-007-0402-z.

34. Levai J.P., Bringer O., Descamps S., Boisgard S. Xenograftrelated complications after filling valgus open wedge tibial osteotomy defects. Rev Chir Orthop Reparatrice Appar Mot. 2003;89(8):707-711.

35. Charalambides C., Beer M., Cobb A.G. Poor results after augmenting autograft with xenograft (Surgibone) in hip revision surgery: a report of 27 cases. Acta Orthop. 2005;76(4):544-549. doi: 10.1080/17453670510041547.

36. Shibuya N., Holloway B.K., Jupiter D.C. A comparative study of incorporation rates between non-xenograft and bovine-based structural bone graft in foot and ankle surgery. J Foot Ankle Surg. 2014;53(2):164-167. doi: 10.1053/j.jfas.2013.10.013.

37. Ledford C.K., Nunley J.A. 2nd, Viens N.A., Lark R.K. Bovine xenograft failures in pediatric foot reconstructive surgery. J Pediatr Orthop. 2013;33(4):458-463. doi: 10.1097/BPO.0b013e318287010d.

38. Elliot R.R., Richards R.H. Failed operative treatment in two cases of pseudarthrosis of the clavicle using internal fixation and bovine cancellous xenograft (Tutobone). J Pediatr Orthop B. 2011;20(5):349-353. doi: 10.1097/BPB.0b013e328346c010.

39. Волокитина Е.А., Хабиб М.С.С. Эндопротезирование тазобедренного сустава при деформациях и дефектах вертлужной впадины (обзор литературы). Уральский медицинский журнал. 2018;156(1):56-63. Volokitina E.A., Habib M.S.S. [Total hip replacement in cases of acetabular bone defects and deformations (review)]. Uralskii meditsinskii zhurnal [Ural Medical Journal]. 2018;156(1):56-63. (In Russian).

40. Сорокин Г.В., Боровков В.Н., Еремин А.В., Орлов А.А. Методы стимуляции репаративной регенерации при лечении переломов конечностей с применением новых биотехнологий. Кафедра травматологии и ортопедии. 2012;(2):36-40. Sorokin G.V., Borovkov V.N., Eremin A.V., Orlov A.A. [Methods of stimulation of reparative regeneration in the treatment of limb fractures using new biotechnologies]. Kafedra travmatologii i ortopedii [The Department of Traumatology and Orthopedics]. 2012;(2):36-40. (In Russian).

41. Li X., Lin Z., Duan Y., Shu X., Jin A., Min S., Yi W. Repair of large segmental bone defects in rabbits using BMP and FGF composite xenogeneic bone. Genet Mol Res. 2015;14(2):6395-6400. doi: 10.4238/2015.June.11.15.

42. Liu F., Wells J.W., Porter R.M., Glatt V., Shen Z., Schinhan M. et al. Interaction between living bone particles and rhBMP-2 in large segmental defect healing in the rat femur. J Orthop Res. 2016;34(12):2137-2145. doi: 10.1002/jor.23255.

43. Long B., Dan L., Jian L., Yunyu H., Shu H., Zhi Y. Evaluation of a novel reconstituted bone xenograft using processed bovine cancellous bone in combination with purified bovine bone morphogenetic protein. Xenotransplantation. 2012;19(2):122-132. doi: 10.1111/j.1399-3089.2012.00694.x.

44. Oryan A., Alidadi S., Moshiri A., Bigham-Sadegh A. Bone morphogenetic proteins: a powerful osteoinductive compound with non-negligible side effects and limitations. Biofactors. 2014;40(5):459-481. doi: 10.1002/biof.1177.

45. Tovar N., Jimbo R., Gangolli R., Witek L., Lorenzoni F., Marin C. et al. Modification of xenogeneic graft materials for improved release of P-15 peptides in a calvarium defect model. J Craniofac Surg. 2014;25(1):70-76. doi: 10.1097/SCS.0b013e3182a2dfe7.

46. Bi L., Hu Y., Fan H., Meng G., Liu J., Li D., Lv R. Treatment of contaminated bone defects with clindamycin-reconstituted bone xenograft-composites. J Biomed Mater Res B Appl Biomater. 2007;82(2):418-427. doi: 10.1002/jbm.b.30747.

47. Lewis C.S., Katz J., Baker M.I., Supronowicz P.R., Gill E., Cobb R.R. Local antibiotic delivery with bovine cancellous chips. J Biomater Appl. 2011;26(4):491-506. doi: 10.1177/0885328210375729.

48. Skelly J.D., Lange J., Filion T.M., Li X., Ayers D.C., Song J. Vancomycin-bearing synthetic bone graft delivers rhBMP-2 and promotes healing of critical rat femoral segmental defects. Clin Orthop Relat Res. 2014;472(12): 4015-4023. doi: 10.1007/s11999-014-3841-1.

49. Lozano-Carrascal N., Satorres-Nieto M., Delgado-Ruiz R., Maté-Sánchez de Val J.E., Gehrke S.A., GargalloAlbiol J., Calvo-Guirado J.L. Scanning electron microscopy study of new bone formation following small and large defects preserved with xenografts supplemented with pamidronate-A pilot study in Fox-Hound dogs at 4 and 8 weeks. Ann Anat. 2017;209:61-68. doi: 10.1016/j.aanat.2016.09.009.

50. Oryan A., Alidadi S., Moshiri A. Plateletrich plasma for bone healing and regeneration. Expert Opin Biol Ther. 2016;16(2):213-232. doi: 10.1517/14712598.2016.1118458.

51. Бухарова Т.Б., Волков А.В., Воронин А.С., Филимонов К.А., Чаплыгин С.С., Мурушиди М.Ю. и др. Разработка тканеинженерной конструкции на основе мультипотентных стромальных клеток жировой ткани человека, трансфицированных геном костного морфогенетического белка BMP-2. Клиническая и экспериментальная морфология. 2013;5(1):45-51. Bukharova T.B., Volkov A.V., Voronin A.S., Filimonov K.A., Chaplygin S.S., Murushidi M.Yu. et al. [Development of tissue engineering construction based on multipotent stromal cells of human adipose tissue transfected with the gene of bone morphogenic protein BMP-2]. Klinicheskaya i eksperimentalnaya morfologiya [Clinical and Experimental Morphology]. 2013;5(1): 45-51. (In Russian).

52. Brett E., Tevlin R., McArdle A., Seo E.Y., Chan C.K.F., Wan D.C., Longaker M.T. Human adipose-derived stromal cell isolation methods and use in osteogenic and adipogenic in vivo applications. Curr Protoc Stem Cell Biol. 2017;43:2H.1.1-2H.1.15. doi: 10.1002/cpsc.41.

53. Chen M., Xu Y., Zhang T., Ma Y., Liu J., Yuan B. et al. Mesenchymal stem cell sheets: a new cell-based strategy for bone repair and regeneration. Biotechnol Lett. 2019;41(3):305-318. doi: 10.1007/s10529-019-02649-7.

54. García J.R., García A.J. Biomaterial-mediated strategies targeting vascularization for bone repair. Drug Deliv Transl Res. 2016;6(2):77-95. doi: 10.1007/s13346-015-0236-0.

55. Oryan A., Kamali A., Moshiri A., Baghaban Eslaminejad M. Role of mesenchymal stem cells in bone regenerative medicine: What is the evidence? Cells Tissues Organs. 2017;204(2):59-83. doi: 10.1159/000469704.

56. Tabatabaei F.S., Samadi R., Tatari S. Surface characteristics of three commercially available grafts and adhesion of stem cells to these grafts. Biomed Mater Eng. 2017;28(6):621-631. doi: 10.3233/BME-171700.

57. Zhao M., Zhou J., Li X., Fang T., Dai W., Yin W., Dong J. Repair of bone defect with vascularized tissue engineered bone graft seeded with mesenchymal stem cells in rabbits. Microsurgery. 2011;31(2):130-137. doi: 10.1002/micr.20854.

58. Qiao W., Liu R., Li Z., Luo X., Huang B., Liu Q. et al. Contribution of the in situ release of endogenous cations from xenograft bone driven by fluoride incorporation toward enhanced bone regeneration. Biomater Sci. 2018;6(11):2951-2964. doi: 10.1039/c8bm00910d.

59. Cho J.S., Yoo D.S., Chung Y.C., Rhee S.H. Enhanced bioactivity and osteoconductivity of hydroxyapatite through chloride substitution. J Biomed Mater Res A. 2014;102(2):455-469. doi: 10.1002/jbm.a.34722.

60. Park J.W., Ko H.J., Jang J.H., Kang H., Suh J.Y. Increased new bone formation with a surface magnesium-incorporated deproteinized porcine bone substitute in rabbit calvarial defects. J Biomed Mater Res A. 2012;100(4):834-840. doi: 10.1002/jbm.a.34017.

61. Oryan A., Kamali A., Moshiri A., Baharvand H., Daemi H. Chemical crosslinking of biopolymeric scaffolds: current knowledge and future directions of crosslinked engineered bone scaffolds. Int J Biol Macromol. 2018;107 (Pt A):678-688. doi: 10.1016/j.ijbiomac.2017.08.184.

62. Antunes A.A., Grossi-Oliveira G.A., Martins-Neto E.C., Almeida A.L., Salata L.A. Treatment of circumferential defects with osseoconductive xenografts of different porosities: a histological, histometric, resonance frequency analysis, and micro-CT study in dogs. Clin Implant Dent Relat Res. 2015;17 Suppl 1:e202-20. doi: 10.1111/cid.12181.

63. Paulo M.J.E., Dos Santos M.A., Cimatti B., Gava N.F., Riberto M., Engel E.E. Osteointegration of porous absorbable bone substitutes: A systematic review of the literature. Clinics (Sao Paulo). 2017;72(7):449-453. doi: 10.6061/clinics/2017(07)10.

64. Go A., Kim S.E., Shim K.M., Lee S.M., Choi S.H., Son J.S., Kang S.S. Osteogenic effect of low-temperatureheated porcine bone particles in a rat calvarial defect model. J Biomed Mater Res A. 2014;102(10):3609-3617. doi: 10.1002/jbm.a.35022.

65. Lei P., Sun R., Wang L., Zhou J., Wan L., Zhou T., Hu Y. A new method for xenogeneic bone graft deproteinization: comparative study of radius defects in a rabbit model. PLoS One. 2015;10(12):e0146005. doi: 10.1371/journal.pone.0146005.

66. Смоленцев Д.В., Гурин М.В., Венедиктов А.А., Евдокимов С.В., Фадеев Р.А. Экстракционная очистка ксеногенного костного матрикса в среде сверхкритического диоксида углерода и оценка свойств полученного материала. Сверхкритические флюиды. Теория и практика. 2017;12(2):60-67. Smolentsev D.V., Gurin M.V., Venediktov A.A., Evdokimov S.V., Fadeev R.A. [Purification of xenogeneic bone matrix by extraction with supercritical carbon dioxide and evaluation of the obtained material]. Sverkhkriticheskie Flyuidy. Teoriya i Praktika [Supercritical Fluids. Theory and Practice]. 2017;12(2):60-67. (In Russian).

67. Meng S., Zhang X., Xu M., Heng B.C., Dai X., Mo X. et al. Effects of deer age on the physicochemical properties of deproteinized antler cancellous bone: an approach to optimize osteoconductivity of bone graft. Biomed Mater. 2015;10(3):035006. doi: 10.1088/1748-6041/10/3/035006.

68. Накоскин А.Н., Ковинька М.А., Талашова И.А., Тушина Н.В., Лунева С.Н. Биохимические маркеры остеогенеза и воспаления в сыворотке крови при ксеноимплантации. Медицинский вестник Северного Кавказа. 2018;13(1):82-85. doi: 10.14300/mnnc.2018.13023. Nakoskin A.N., Kovinka M.A., Talashova I.A., Tushina N.V., Luneva S.N. [Biochemical markers of osteogenesis and inflammation in the blood serum in xenoimplantation]. Meditsinskii vestnik Severnogo Kavkaza [Medical News of North Caucasus]. 2018;13(1):82-85. doi: 10.14300/mnnc.2018.13023. (In Russian).

69. Bigham-Sadegh A., Oryan A. Basic concepts regarding fracture healing and the current options and future directions in managing bone fractures. Int Wound J. 2015;12(3):238-247. doi: 10.1111/iwj.12231.

70. Calori G.M., Mazza E., Colombo M., Ripamonti C. The use of bone-graft substitutes in large bone defects: any specific needs? Injury. 2011;42 Suppl 2:S56-63. doi: 10.1016/j.injury.2011.06.011.

71. Keskin D., Gundoğdu C., Atac A.C. Experimental comparison of bovine-derived xenograft, xenograft-autologous bone marrow and autogenous bone graft for the treatment of bony defects in the rabbit ulna. Med Princ Pract. 2007;16(4):299-305. doi: 10.1159/000102153.

72. Voor M.J., Yoder E.M., Burden R.L.Jr. Xenograft bone inclusion improves incorporation of hydroxyapatite cement into cancellous defects. J Orthop Trauma. 2011; 25(8):483-487. doi: 10.1097/BOT.0b013e318224a3c2.


Для цитирования:


Стогов М.В., Смоленцев Д.В., Киреева Е.А. Костные ксеноматериалы в травматологии и ортопедии (аналитический обзор литературы). Травматология и ортопедия России. 0;.

For citation:


Stogov M.V., Smolentsev D.V., Kireeva E.A. Bone Xenografts in Trauma and Orthopaedics (Analytical Literature Review). Traumatology and Orthopedics of Russia. 0;. (In Russ.)

Просмотров: 18


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2311-2905 (Print)
ISSN 2542-0933 (Online)