<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/" article-type="other" dtd-version="1.2" xml:lang="en"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher-id">Traumatology and Orthopedics of Russia</journal-id><journal-title-group><journal-title xml:lang="en">Traumatology and Orthopedics of Russia</journal-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>Травматология и ортопедия России</trans-title></trans-title-group></journal-title-group><issn publication-format="print">2311-2905</issn><issn publication-format="electronic">2542-0933</issn><publisher><publisher-name xml:lang="en">Vreden National Medical Research Center of Traumatology and Orthopedics</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">639</article-id><article-id pub-id-type="doi">10.21823/2311-2905-2016-22-4-76-87</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="en"><subject>Theoretical and experimental studies</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="ru"><subject>Теоретические и экспериментальные исследования</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="toc-heading" xml:lang="zh"><subject>Theoretical and experimental studies</subject></subj-group><subj-group subj-group-type="article-type"><subject></subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title xml:lang="en">MORPHOGENESIS OF KNEE HYALINE CARTILAGE DURING INTRAARTICULAR INJECTION OF PLATELET-RICH AUTOLOGOUS PLASMA AND/OR HYALURONIC ACID PREPARATION IN RATS WITH EXPERIMENTAL OSTEOARTHRITIS</article-title><trans-title-group xml:lang="ru"><trans-title>МОРФОГЕНЕЗ ГИАЛИНОВОГО ХРЯЩА КОЛЕННОГО СУСТАВА НА ФОНЕ ВНУТРИСУСТАВНОГО ВВЕДЕНИЯ ОБОГАЩЕННОЙ ТРОМБОЦИТАМИ АУТОЛОГИЧНОЙ ПЛАЗМЫ И/ИЛИ ПРЕПАРАТА ГИАЛУРОНОВОЙ КИСЛОТЫ У КРЫС С ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНЫМ ОСТЕОАРТРОЗОМ</trans-title></trans-title-group></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Demkin</surname><given-names>S. A.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Демкин</surname><given-names>С. А.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>graduate student, Department of Traumatology, Orthopedics and Field Surgery, Volgograd State Medical University; Head of Laboratory of Experimental and Clinical Orthopedics, Volgograd Medical Scientific Centre</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>аспирант кафедры травматологии, ортопедии, ВПХ с курсом травматологии и ортопедии</p></bio><email>smdem@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Malanin</surname><given-names>D. A.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Маланин</surname><given-names>Д. А.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>Dr. Sci. (Med.) professor, the Head of the Department of Traumatology, Orthopedics and Field Surgery, Volgograd State Medical University; Head of Laboratory of Experimental and Clinical Orthopedics for Volgograd Medical Scientific Centre</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>д-р мед. наук, профессор заведующий кафедрой травматологии, ортопедии и ВПХ с курсом травматологии и ортопедии; заведующий лабораторией экспериментальной и клинической ортопедии</p></bio><email>smdem@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff2"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Rogova</surname><given-names>L. N.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Рогова</surname><given-names>Л. Н.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>Dr. Sci. (Med.) professor, the Head of Physiopathology Department</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>д-р мед. наук, профессор заведующая кафедрой патологической физиологии</p></bio><email>smdem@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Snigur</surname><given-names>G. L.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Снигур</surname><given-names>Г. Л.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><email>smdem@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Grigorieva</surname><given-names>N. V.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Григорьева</surname><given-names>Н. В.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>Dr. Sci. (Med.), professor at Pathologic Anatomy Department</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>д-р мед. наук, профессор кафедры патологической анатомии</p></bio><email>smdem@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name-alternatives><name xml:lang="en"><surname>Baydova</surname><given-names>K. V.</given-names></name><name xml:lang="ru"><surname>Байдова</surname><given-names>К. В.</given-names></name></name-alternatives><address><country country="RU">Russian Federation</country></address><bio xml:lang="en"><p>laboratory assistant</p></bio><bio xml:lang="ru"><p>лаборант ГБУ «Волгоградский медицинский научный центр»</p></bio><email>smdem@mail.ru</email><xref ref-type="aff" rid="aff3"/></contrib></contrib-group><aff-alternatives id="aff1"><aff><institution xml:lang="en">Volgograd State Medical University pl. Pavshikh Bortsov, 1, Volgograd, 400131, Russia</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">ГБОУ ВПО «Волгоградский государственный медицинский университет» Минздрава России пл. Павших борцов, д. 1, г. Волгоград, 400131, Россия</institution></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff2"><aff><institution xml:lang="en">Volgograd State Medical University pl. Pavshikh Bortsov, 1, Volgograd, 400131, Russia&#13;
Volgograd Medical Scientific Centre 1G, ul. Rokossovskogo, Volgograd, 400081, Russia</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">ГБОУ ВПО «Волгоградский государственный медицинский университет» Минздрава России пл. Павших борцов, д. 1, г. Волгоград, 400131, Россия &#13;
ГБУ «Волгоградский медицинский научный центр»&#13;
ул. Рокоссовского, д.1Г, г. Волгоград, 400081, Россия</institution></aff></aff-alternatives><aff-alternatives id="aff3"><aff><institution xml:lang="en">Volgograd Medical Scientific Centre 1G, ul. Rokossovskogo, Volgograd, 400081, Russia</institution></aff><aff><institution xml:lang="ru">ГБУ «Волгоградский медицинский научный центр»&#13;
ул. Рокоссовского, д.1Г, г. Волгоград, 400081, Россия</institution></aff></aff-alternatives><pub-date date-type="pub" iso-8601-date="2016-12-29" publication-format="electronic"><day>29</day><month>12</month><year>2016</year></pub-date><volume>22</volume><issue>4</issue><issue-title xml:lang="en"/><issue-title xml:lang="ru"/><fpage>76</fpage><lpage>87</lpage><history><date date-type="received" iso-8601-date="2017-01-02"><day>02</day><month>01</month><year>2017</year></date><date date-type="accepted" iso-8601-date="2017-01-02"><day>02</day><month>01</month><year>2017</year></date></history><permissions><copyright-year>2016</copyright-year><ali:free_to_read xmlns:ali="http://www.niso.org/schemas/ali/1.0/"/></permissions><self-uri xlink:href="https://journal.rniito.org/jour/article/view/639">https://journal.rniito.org/jour/article/view/639</self-uri><abstract xml:lang="en"><p>According to current concepts, the influence of autologous platelet-rich plasma (PRP) and high molecular hyaluronates (HA) on the repair of hyaline cartilage during its inflammatory and degenerative changes has been insufficiently studied yet. The objective of the work was to evaluate the morphological changes in the structure of hyaline cartilage in experimental osteoarthritis after intra-articular injection of PRP and/or HA. Material and methods. The authors used 50 adult rats of Wistar line, weighing 250±2,2 g., distributed into five groups of 10 animals (two control and three experimental groups). An experimental gonarthosis was simulated on four groups of animals. Animals of the first experimental group received intra-articular injection of PRP, the second group – HA, the third – both PRP and HA. Results. No morphological signs of degenerative and inflammatory changes in the first control group were identified. Following osteoarthritis simulation the articular cartilage thinned to 121±20,4 microns (p&lt;0,05) and the volume fraction of chondrocyte decreased to 1,2±0,6% (p&lt;0,05). The authors observed an uneven coloration of collagen fibers with severe tinctorial properties disorder of the articular cartilage matrix. After the RPR introduction the authors observed tickening of the articular cartilage up to 275±18,9 micron (p&lt;0,05) and the volume fraction of chondrocytes up to 18,4±2,0% (p&lt;0,05). The contour of the cartilage surface became smoother with the formation of a cell-free zone. Collagen fibers demonstrated a uniform distribution, tinctorial properties of cartilage matrix in all areas were preserved, no signs of inflammation were noted. After HA introduction the authors observed thickening of the cartilage plate up to 264±21,3 microns (p&lt;0,05) and the volume fraction of chondrocytes up to 11,6±1,2% (p&lt;0,05). The surface of the cartilage featured uneven contours due to multiple areas of pulping. Uneven tinctorial properties of cartilage matrix, thickness and orientation of collagen fibres were retained. No signes of inflammation were observed. After the combined consecutive application of PRP and HA cartilage thickness increased up to 268±15,3 microns (p&lt;0,05) and the volume fraction of chondrocytes increased up to 12,7±0,9% (p&lt;0,05). Individual portions of pulping on the cartilage surface were observed. Tinctorial properties of the cartilage matrix were preserved; the focal uneven staining of collagen fibers in the basal zone was observed. No signs of inflammation were noted. Conclusion. During osteoarthritis simulation in knee joints of experimental Wistar line rats the authors observed severe structural changes in articular hyaline cartilage including complete destruction accompanied by vascular proliferation and granulomatous inflammation. Intraarticular injections of PRP, HA as well as PRP in combination with HA during the simulation of osteoarthrosis were accompanied by a decrease in the severity of degenerative and dystrophic processes and improval of tinctorial properties of articular cartilage matrix. Sole application of PRP or consecutive application of PRP followed by HA were observed as having the more significant reparative effect on articular cartilage as compared to HA.</p></abstract><trans-abstract xml:lang="ru"><p>Актуальность. Влияние обогащенной тромбоцитами аутологичной плазмы (ОТП) и препаратов гиалуроновой кислоты (ГК) на течение воспалительного процесса и пролиферации в тканях суставов на сегодняшний день изучено недостаточно. Целью исследования являлась оценка морфологических изменений в структуре гиалинового хряща коленного сустава при экспериментальном остеоартрозе после внутрисуставного введения ОТП и/или ГК. Материалом для экспериментального исследования послужили 50 половозрелых крыс линии Wistar массой 250±2,2 г, распределенных на пять групп по 10 животных в каждой (2 опытные и 3 основные). На крысах второй опытной и трех основных групп моделировали экспериментальный гонартроз. Крысы первой основной группы получали внутрисуставное введение ОТП, второй основной группы – ГК, третьей основной – ОТП и ГК. Животным первой опытной группы (без артроза) в коленный сустав вводили 0,9% раствор NaCl. Результаты. В первой опытной группе животных морфологических признаков дегенеративных и дистрофических изменений суставного хряща не наблюдалось. После моделирования остеоартроза произошли истончение суставного хряща до 121±20,4 мкм (р&lt;0,05) и снижение объемной доли хондроцитов до 1,2±0,6% (р&gt;&lt;0,05), отмеча- лась неравномерность окрашивания коллагеновых волокон с выраженным нарушением тинкториальных свойств ма- трикса хрящевой ткани. После введения ОТП произошло увеличение толщины суставного хряща до 275±18,9 мкм (р&gt;&lt;0,05) и объемной доли хондроцитов до 18,4±2,0% (р&gt;&lt;0,05). Контур поверхности хряща становился более ровным с формированием бесклеточной зоны. Коллагеновые волокна приобретали равномерное распределение, сохранялись тинкториальные свойства хрящевого матрикса во всех зонах. На фоне введения ГК было установлено увеличение толщины хрящевой пластинки до 264±21,3 мкм (р&gt;&lt;0,05) и объемной доли хондроцитов до 11,6±1,2% (р&gt;&lt;0,05). Поверхность хряща имела неровные контуры за счет много- численных участков разволокнений и узур. Сохранялась неравномерность тинкториальных свойств хрящевого матрикса, толщины и направленности коллагеновых волокон. После совместного последовательного применения ОТП и ГК наблюдали увеличение толщины суставного хряща до 268±15,3 мкм (р&gt;&lt;0,05) и объемной доли хондроцитов до 12,7±0,9% (р&gt;&lt;0,05). На поверхности хряща прослеживали единичные участки разволокнений. Сохранялись тинкториальные свойства хрящевого матрикса, в базальной зоне определялась очаговая неравномерность окрашивания коллагеновых волокон. Выводы. При моделировании остеоартроза в коленном суставе у половозрелых крыс линии Wistar возникают грубые структурные изменения суставного хряща, вплоть до его полного разрушения, сопровождающегося со- судистой пролиферацией и гранулематозным воспалением. Введение ОТП, ГК, а также ОТП в сочетании с ГК на фоне развившегося остеоартроза сопровождается снижением выраженности дегенеративно-дистрофических изменений, улучшением показателей тинкториальных свойств матрикса суставного хряща. Применение ОТП отдельно или последовательное введение ОТП и ГК оказывают более выраженное положительное влияние на репаративный процесс в хрящевой ткани по сравнению с внутрисуставным введением ГК.&gt; &lt;0,05) и снижение объемной доли хондроцитов до 1,2±0,6% (р&lt;0,05), отмеча- лась неравномерность окрашивания коллагеновых волокон с выраженным нарушением тинкториальных свойств ма- трикса хрящевой ткани. После введения ОТП произошло увеличение толщины суставного хряща до 275±18,9 мкм (р&gt;&lt;0,05) и объемной доли хондроцитов до 18,4±2,0% (р&gt;&lt;0,05). Контур поверхности хряща становился более ровным с формированием бесклеточной зоны. Коллагеновые волокна приобретали равномерное распределение, сохранялись тинкториальные свойства хрящевого матрикса во всех зонах. &gt; &lt;0,05) отмечалась неравномерность окрашивания коллагеновых волокон с выраженным нарушением тинкториальных свойств матрикса хрящевой ткани. После введения ОТП произошло увеличение толщины суставного хряща до 275±18,9 мкм (р&lt;0,05) и объемной доли хондроцитов до 18,4±2,0% &gt;&lt;0,05) и объемной доли хондроцитов до 18,4±2,0% (р&lt;0,05) и объемной доли хондроцитов до 18,4±2,0% &gt;&lt;0,05) Контур поверхности хряща становился более ровным с формированием бесклеточной зоны. Коллагеновые волокна приобретали равномерное распределение, сохранялись тинкториальные свойства хрящевого матрикса во всех зонах. На фоне введения ГК было установлено увеличение толщины хрящевой пластинки до 264±21,3 мкм (р&lt;0,05) и объемной доли хондроцитов до 18,4±2,0% &gt;&lt;0,05) и объемной доли хондроцитов до 11,6±1,2% (р&lt;0,05) и объемной доли хондроцитов до 18,4±2,0% &gt;&lt;0,05) Поверхность хряща имела неровные контуры за счет много- численных участков разволокнений и узур. Сохранялась неравномерность тинкториальных свойств хрящевого матрикса, толщины и направленности коллагеновых волокон. После совместного последовательного применения ОТП и ГК наблюдали увеличение толщины суставного хряща до 268±15,3 мкм (р&lt;0,05) и объемной доли хондроцитов до 18,4±2,0% &gt;&lt;0,05) и объемной доли хондроцитов до 12,7±0,9% (р&lt;0,05). На поверхности хряща прослеживали единичные участки разволокнений. Сохранялись тинкториальные свойства хрящевого матрикса, в базальной зоне определялась очаговая неравномерность окрашивания коллагеновых волокон. Выводы. При моделировании остеоартроза в коленном суставе у половозрелых крыс линии Wistar возникают грубые структурные изменения суставного хряща, вплоть до его полного разрушения, сопровождающегося сосудистой пролиферацией и гранулематозным воспалением. Введение ОТП, ГК, а также ОТП в сочетании с ГК на фоне развившегося остеоартроза сопровождается снижением выраженности дегенеративно-дистрофических изменений, улучшением показателей тинкториальных свойств матрикса суставного хряща. Применение ОТП отдельно или последовательное введение ОТП и ГК оказывают более выраженное положительное влияние на репаративный процесс в хрящевой ткани по сравнению с внутрисуставным введением ГК.</p><p> </p></trans-abstract><kwd-group xml:lang="en"><kwd>osteoarthritis</kwd><kwd>high molecular hyaluronate</kwd><kwd>autologous platelet-rich plasma</kwd><kwd>articular cartilage</kwd><kwd>inflammation</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>остеоартроз</kwd><kwd>суставной хрящ</kwd><kwd>обогащенная тромбоцитами плазма</kwd><kwd>гиалуроновая кислота</kwd></kwd-group><funding-group/></article-meta></front><body></body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>1.Башкина А.С., Широкова Л.Ю., Князева Т.С., Паруля О.М., Абросимова Е.Б., Носков С.М. применение обогащенной тромбоцитами аутолоичной плазмы в купировании болевого синдрома большого вертела. Травматология и ортопедия России. 2011;2(60):57-61.</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>2.Котельников Г.П., Ларцев Ю.В., Махова А.Н. Сравнительная оценка структурных изменений тканей сустава при различных моделях экспериментального артроза. Казанский медицинский журнал. 2006;(1):31-35.</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>3.Маланин Д.А., Новочадов В.В., Демкин С.А., Демещенко М.В., Данилов Д.И. Обогащенная тромбоцитами аутологичная плазма в лечении пациентов с гонартрозом III стадии. Травматология и ортопедия России. 2014;3(73):52-59.</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>4.Широкова Л.Ю., Носков С.М., Бахтиарова Т.И., Снигирева А.В., Носкова Т.С. Локальная терапия гонартроза аутологичной обогащенной тромбоцитами плазмой. Современные технологии в медицине. 2012;1:97-100.</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>5.Andia I., Sanchez M., Maffulli N. Joint pathology and platelet-rich plasma therapies. Expert opin Biol Ther. 2012;12(1):7-22. DOI: 10.1517/14712598.2012.632765.</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>6.Coudriet g.M., He J., Trucco M. Hepatocyte growth factor modulates interleukin-6 production in bone marrow derived macrophages:implications for inflammatory mediated diseases. PLoS one. 2010;5 (11):http://www. plosone.org/article/info%3Adoi%2f10.1371%2fjournal. pone.0015384.</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>7.Drengk A., Zapf A., Sturmer E.K., Sturmer K.M., frosch K.H. Influence of platelet-rich plasma on chondrogenic differentiation and proliferation of chondrocytes and mesenchymal stem cells. Cells Tissues organs. 2009;189(5):317-326. DOI: 10.1159/000151290.</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>8.Filardo G., Kon E., Roffi A., Di Matteo B., Merli M.L., Marcacci M. Platelet-rich plasma:why intra-articular? A systematic review of preclinical studies and clinical evidence on PRP for joint degeneration. Knee Surg Sports Traumatol Arthrosc. 2015;23(9):2459-2474. DOI: 10.1007/s00167-013-2743-1.</mixed-citation></ref><ref id="B9"><label>9.</label><mixed-citation>9.Guner S., Buyukbebeci O. Analyzing the effects of platelet gel on knee osteoarthritis in the rat model. Clin Appl Thromb Hemost. 2013;19(5):494-498. DOI: 10.1177/1076029612452117.</mixed-citation></ref><ref id="B10"><label>10.</label><mixed-citation>10.Hedbom E., Hauselmann H.J. Molecular aspects of pathogenesis in osteoarthritis:the role of inflammation. Cell Mol Life Sci. 2002;59(1):45-53.</mixed-citation></ref><ref id="B11"><label>11.</label><mixed-citation>11.Karlsson J., Sjögren L.S., Lohmander L.S. Comparison of two hyaluronan drugs and placebo in patients with knee osteoarthritis. A controlled, randomized, double-blind, parallel-design multicentre study. rheumatology (oxford). 2002;(11):1240-1248.</mixed-citation></ref><ref id="B12"><label>12.</label><mixed-citation>12.Kuettner K.E., goldberg V.M. Osteoarthritic Disorders. Rosemont, IL: American Academy of Orthopedic Surgeons; 1995. 507 р.</mixed-citation></ref><ref id="B13"><label>13.</label><mixed-citation>13.Kwon D.R., Park g.y., Lee S.U. The effects of intra-articular platelet-rich plasma injection according to the severity of collagenase induced knee osteoarthritis in a rabbit model. Ann rehabil Med. 2012;36(4):458-465. DOI: 10.5535/arm.2012.36.4.458.</mixed-citation></ref><ref id="B14"><label>14.</label><mixed-citation>14.Malfait A.M., Little C.B., McDougall J.J. A commentary on modelling osteoarthritis pain in small animals. osteoarthritis Cartilage. 2013;21(9):1316-1326. DOI: 10.1016/j.joca.2013.06.003.</mixed-citation></ref><ref id="B15"><label>15.</label><mixed-citation>15.Moreland L.W. Review Intra-articular hyaluronan (hyaluronic acid) and hylans for the treatment of osteoarthritis:mechanisms of action. Arthritis res Ther. 2003;2(5):54-67.</mixed-citation></ref><ref id="B16"><label>16.</label><mixed-citation>16.Oliveira M.Z., Albano M.B., Namba M.M., Cunha L.A.M., Gonçalves R.R.L., Trindade E.S., Andrade L.F., Vidigal L. Effect of hyaluronic acids as chondroprotective in experimental model of osteoarthrosis. rev Bras ortop. 2014;49(1):62-68. DOI: 10.1016/j.rboe.2014.01.007.</mixed-citation></ref><ref id="B17"><label>17.</label><mixed-citation>17.Sezgin M., Demirel A.C., Karaca C. Does hyaluronan affect inflammatory cytokines in knee osteoarthritis? Rheumatol Int. 2005;(25):264-269. DOI: 10.1007/s00296-003-0428-7.</mixed-citation></ref><ref id="B18"><label>18.</label><mixed-citation>18.Walshe T.E., Dole V.S., Maharaj A.S.R. Inhibition of VEgf or Tgf-beta signaling activates endothelium and increases leukocyte rolling. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2009;29(8):1185-1192. DOI: 10.1161/ATVBAHA.109.186742.</mixed-citation></ref><ref id="B19"><label>19.</label><mixed-citation>19. Wang C.T., Lin Y.T., Chiang B.L., Lin Y.H., Hou S.M. High molecular weight hyaluronic acid down-regulates the gene expression of osteoarthritis-associated cytokines and enzymes in fibroblast-like synoviocytes from patients with early osteoarthritis. osteoarthritis Cartilage. 2006;14(12):1237-1247. DOI: 10.1016/j.joca.2006.05.009.</mixed-citation></ref><ref id="B20"><label>20.</label><mixed-citation>20. Yang S.Y., Ahn S.T., Rhie J.W., Lee K.Y., Choi J.H., Lee B.J., Oh G.T. Platelet supernatant promotes proliferation of auricularchondrocytes and formation of chondrocyte mass. Ann Plast Surg. 2000;44(4):405-411.</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
